Preview

Альманах клинической медицины

Расширенный поиск

Ассоциация генетических маркеров целиакии с репродуктивными нарушениями

https://doi.org/10.18786/2072-0505-2019-47-006

Полный текст:

Аннотация

Обоснование. Многочисленные исследования показали связь генов, вовлеченных в иммунный ответ, с бесплодием и невынашиванием беременности. Наиболее значимые ассоциации установлены для генов цитокинов (IL1B, IL6, IL10, IL18), хемокинов (CXCL9, CXCL10, CXCL11), генов главного комплекса гистосовместимости HLA II класса (DQA1, DQB1, DRB1). Гены HLA ассоциированы с целиакией, генетически детерминированным аутоиммунным заболеванием, одним из симптомов которого является нарушение репродуктивной функции у мужчин и женщин. Цель – оценить распространенность полиморфных вариантов генов иммунного ответа (HLA: DQA1 DQB1, DRB1; TNF, IL10, CXCL10) у пациентов с нарушением репродуктивной функции. Материал и методы. В пилотном исследовании изучен полиморфизм генов IL10 (rs1800872), TNF (rs1800629), CXCL10 (rs4386624), HLA II класса (DQA1, DQB1, DRB1) у семейных пар (n = 220) с репродуктивными нарушениями (бесплодие и невынашивание беременности). Генотипирование осуществляли с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (реал-тайм ПЦР) и рестрикционного анализа продуктов амплификации (ПЦР-ПДРФ). Для сравнения использовали популяционные данные о генотипах и аллелях по исследуемым вариантам генов IL10 (rs1800872), TNF (rs1800629), CXCL10 (rs4386624). Различия в распространенности аллелей и генотипов оценивали с помощью χ2 теста.  Достигнутый уровень значимости различий считали при р < 0,05. Гаплотипическое разнообразие рассчитывали с помощью программы Arlequin, версия 3.5.x. Результаты. Наблюдали значительное перераспределение генотипов и аллелей по варианту гена TNF (rs1800629) у мужчин с нарушениями функций репродукции по сравнению с популяционными данными. Для других изученных вариантов генов различий не обнаружено. В исследуемой выборке частота гаплотипов генов HLA II класса (DQA1, DQB1, DRB1), связанных с целиакией (DQ2 и DQ8), составила 23,8%. Заключение. Полученные результаты свидетельствуют о важной роли генов, связанных с целиакией, в развитии нарушений репродукции.

Об авторах

Л. И. Минайчева
Научно-исследовательский институт медицинской генетики (НИИ медицинской генетики) ФГБНУ «Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук»
Россия

д-р мед. наук, врач-генетик, медико-генетический центр

634040, г. Томск, ул. Московский тракт, 3, Российская Федерация
+7 (913) 864 61 71



Е. Ю. Брагина
Научно-исследовательский институт медицинской генетики (НИИ медицинской генетики) ФГБНУ «Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук»
Россия

канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаборатории популяционной генетики

634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, 10, Российская Федерация



И. Ж. Жалсанова
Научно-исследовательский институт медицинской генетики (НИИ медицинской генетики) ФГБНУ «Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук»
Россия

аспирант лаборатории популяционной генетики

634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, 10, Российская Федерация



Н. А. Чеснокова
Научно-исследовательский институт медицинской генетики (НИИ медицинской генетики) ФГБНУ «Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук»
Россия

ординатор

634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, 10, Российская Федерация



А. В. Марусин
Научно-исследовательский институт медицинской генетики (НИИ медицинской генетики) ФГБНУ «Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук»
Россия

канд. биол. наук, науч. сотр. лаборатории эволюционной генетики

634050, г. Томск, ул. Набережная реки Ушайки, 10, Российская Федерация



Список литературы

1. Паскарь СС, Боярский КЮ. Эпидемиологические аспекты бесплодного брака (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2017;23(5): 23–6. doi: 10.17116/repro201723523-26.

2. Здравоохранение в России. 2017: Статистический сборник. М.: Росстат; 2017. 170 с.

3. El Hachem H, Crepaux V, May-Panloup P, Descamps P, Legendre G, Bouet PE. Recurrent pregnancy loss: current perspectives. Int J Womens Health. 2017;9:331–45. doi: 10.2147/IJWH.S100817.

4. Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Evaluation and treatment of recurrent pregnancy loss: a committee opinion. Fertil Steril. 2012;98(5): 1103–11. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.06.048.

5. Gupta B, Singh P. The evolving role of genetics in recurrent pregnancy loss. In: Mehta S, Gupta B, editors. Recurrent pregnancy loss. Singapore: Springer; 2018. p. 67–77.

6. Robberecht C, Pexsters A, Deprest J, Fryns JP, D'Hooghe T, Vermeesch JR. Cytogenetic and morphological analysis of early products of conception following hystero-embryoscopy from couples with recurrent pregnancy loss. Prenat Diagn. 2012;32(10): 933–42. doi: 10.1002/pd.3936.

7. Tur-Torres MH, Garrido-Gimenez C, Alijotas-Reig J. Genetics of recurrent miscarriage and fetal loss. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2017;42:11–25. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2017.03.007.

8. Баранов ВС, ред. Генетический паспорт – основа индивидуальной и предиктивной медицины. СПб.: Н-Л; 2009. 528 с.

9. Pereza N, Ostojić S, Kapović M, Peterlin B. Systematic review and meta-analysis of genetic association studies in idiopathic recurrent spontaneous abortion. Fertil Steril. 2017;107(1): 150–9.e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.10.007.

10. Shi X, Xie X, Jia Y, Li S. Maternal genetic polymorphisms and unexplained recurrent miscarriage: a systematic review and meta-analysis. Clin Genet. 2017;91(2): 265–84. doi: 10.1111/cge.12910.

11. Tersigni C, D'Ippolito S, Di Nicuolo F, Marana R, Valenza V, Masciullo V, Scaldaferri F, Malatacca F, de Waure C, Gasbarrini A, Scambia G, Di Simone N. Recurrent pregnancy loss is associated to leaky gut: a novel pathogenic model of endometrium inflammation? J Transl Med. 2018;16(1): 102. doi: 10.1186/s12967-018-1482-y.

12. D'Ippolito S, Gasbarrini A, Castellani R, Rocchetti S, Sisti LG, Scambia G, Di Simone N. Human leukocyte antigen (HLA) DQ2/DQ8 prevalence in recurrent pregnancy loss women. Autoimmun Rev. 2016;15(7): 638–43. doi: 10.1016/j.autrev.2016.02.009.

13. Saccone G, Berghella V, Sarno L, Maruotti GM, Cetin I, Greco L, Khashan AS, McCarthy F, Martinelli D, Fortunato F, Martinelli P. Celiac disease and obstetric complications: a systematic review and metaanalysis. Am J Obstet Gynecol. 2016;214(2): 225–34. doi: 10.1016/j.ajog.2015.09.080.

14. Лазебник ЛБ, Ткаченко ЕИ, Орешко ЛС, Ситкин СИ, Карпов АА, Немцов ВИ, Осипенко МФ, Радченко ВГ, Федоров ЕД, Медведева ОИ, Селиверстов ПВ, Соловьева ЕА, Шабанова АА, Журавлева МС. Рекомендации по диагностике и лечению целиакии взрослых. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2015;(5): 3–12.

15. Admou B, Essaadouni L, Krati K, Zaher K, Sbihi M, Chabaa L, Belaabidia B, Alaoui-Yazidi A. Atypical celiac disease: from recognizing to managing. Gastroenterol Res Pract. 2012;2012:637187. doi: 10.1155/2012/637187.

16. Sollid LM, Thorsby E. HLA susceptibility genes in celiac disease: genetic mapping and role in pathogenesis. Gastroenterology. 1993;105(3): 910–22. doi: 10.1016/0016-5085(93)90912-V.

17. Polvi A, Arranz E, Fernandez-Arquero M, Collin P, Mäki M, Sanz A, Calvo C, Maluenda C, Westman P, de la Concha EG, Partanen J. HLA-DQ2-negative celiac disease in Finland and Spain. Hum Immunol. 1998;59(3): 169–75. doi: 10.1016/S0198-8859(98)00008-1.

18. Barisani D, Ceroni S, Meneveri R, Cesana BM, Bardella MT. IL-10 polymorphisms are associated with early-onset celiac disease and severe mucosal damage in patients of Caucasian origin. Genet Med. 2006;8(3): 169–74. doi: 10.109701.gim.0000204464.87540.39.

19. de la Concha EG, Fernández-Arquero M, Vigil P, Rubio A, Maluenda C, Polanco I, Fernandez C, Figueredo MA. Celiac disease and TNF promoter polymorphisms. Hum Immunol. 2000;61(5): 513–7. doi: 10.1016/S0198-8859(99)00187-1.

20. Garrote JA, Arranz E, Tellería JJ, Castro J, Calvo C, Blanco-Quirós A. TNF alpha and LT alpha gene polymorphisms as additional markers of celiac disease susceptibility in a DQ2-positive population. Immunogenetics. 2002;54(8): 551–5. doi: 10.1007/s00251-002-0498-9.

21. Bondar C, Araya RE, Guzman L, Rua EC, Chopita N, Chirdo FG. Role of CXCR3/CXCL10 axis in immune cell recruitment into the small intestine in celiac disease. PLoS One. 2014;9(2):e89068. doi: 10.1371/journal.pone.0089068.

22. Bragde H, Jansson U, Fredrikson M, Grodzinsky E, Söderman J. Celiac disease biomarkers identified by transcriptome analysis of small intestinal biopsies. Cell Mol Life Sci. 2018;75(23): 4385–401. doi: 10.1007/s00018-018-2898-5.

23. Tersigni C, Castellani R, de Waure C, Fattorossi A, De Spirito M, Gasbarrini A, Scambia G, Di Simone N. Celiac disease and reproductive disorders: meta-analysis of epidemiologic associations and potential pathogenic mechanisms. Hum Reprod Update. 2014;20(4): 582–93. doi: 10.1093/humupd/dmu007.

24. Khashan AS, Henriksen TB, Mortensen PB, McNamee R, McCarthy FP, Pedersen MG, Kenny LC. The impact of maternal celiac disease on birthweight and preterm birth: a Danish population-based cohort study. Hum Reprod. 2010;25(2): 528–34. doi: 10.1093/humrep/dep409.

25. Farthing MJ, Rees LH, Edwards CR, Dawson AM. Male gonadal function in coeliac disease: 2. Sex hormones. Gut. 1983;24(2): 127–35. doi: 10.1136/gut.24.2.127.

26. Farthing MJ, Rees LH, Dawson AM. Male gonadal function in coeliac disease: III. Pituitary regulation. Clin Endocrinol (Oxf ). 1983;19(6): 661–71. doi: 10.1111/j.1365-2265.1983.tb00043.x.

27. Ebisch IM, Pierik FH, DE Jong FH, Thomas CM, Steegers-Theunissen RP. Does folic acid and zinc sulphate intervention affect endocrine parameters and sperm characteristics in men? Int J Androl. 2006;29(2): 339–45. doi: 10.1111/j.1365-2605.2005.00598.x.

28. Wallock LM, Tamura T, Mayr CA, Johnston KE, Ames BN, Jacob RA. Low seminal plasma folate concentrations are associated with low sperm density and count in male smokers and nonsmokers. Fertil Steril. 2001;75(2): 252–9. doi: 10.1016/S0015-0282(00)01697-6.

29. Ebisch IM, Thomas CM, Peters WH, Braat DD, Steegers-Theunissen RP. The importance of folate, zinc and antioxidants in the pathogenesis and prevention of subfertility. Hum Reprod Update. 2007;13(2): 163–74. doi: 10.1093/humupd/dml054.

30. Zugna D, Richiardi L, Akre O, Stephansson O, Ludvigsson JF. A nationwide population-based study to determine whether coeliac disease is associated with infertility. Gut. 2010;59(11): 1471–5. doi: 10.1136/gut.2010.219030.

31. Ciacci C, De Rosa A, de Michele G, Savino G, Squillante A, Iovino P, Sabbatini F, Mazzacca G. Sexual behaviour in untreated and treated coeliac patients. Eur J Gastroenterol Hepatol. 1998;10(8): 649–51.

32. Kotze LM. Gynecologic and obstetric findings related to nutritional status and adherence to a gluten-free diet in Brazilian patients with celiac disease. J Clin Gastroenterol. 2004;38(7): 567–74. doi: 10.1097/01.mcg.0000131720.90598.6a.

33. Брагина ЕЮ, Фрейдин МБ, Бабушкина НП, Гараева АФ, Колоколова ОВ, Жалсанова ИЖ, Пузырев ВП. Анализ генов цитокиновой сети в развитии «обратной» коморбидности для бронхиальной астмы и туберкулеза. Медицинская генетика. 2017;16(1): 20–4.

34. Самгина ТА, Бушуева ОЮ, Иванов ВП, Солодилова МА, Назаренко ПМ, Полоников АВ. Связь промоторного полиморфизма -308G / A гена фактора некроза опухоли с тяжестью течения острого панкреатита у русской популяции жителей Курской области. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2014;(9): 17–20.

35. Excoffier L, Lischer HE. Arlequin suite ver 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows. Mol Ecol Resour. 2010;10(3): 564–7. doi: 10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x.

36. Khan S, Mandal RK, Jawed A, Dar SA, Wahid M, Panda AK, Areeshi MY, Ahmed Khan ME, Haque S. TNF-α -308 G > A (rs1800629) polymorphism is associated with celiac disease: A meta-analysis of 11 case-control studies. Sci Rep. 2016;6:32677. doi: 10.1038/srep32677.

37. Fan W, Maoqing W, Wangyang C, Fulan H, Dandan L, Jiaojiao R, Xinshu D, Binbin C, Yashuang Z. Relationship between the polymorphism of tumor necrosis factor-α-308 G>A and susceptibility to inflammatory bowel diseases and colorectal cancer: a meta-analysis. Eur J Hum Genet. 2011;19(4): 432–7. doi: 10.1038/ejhg.2010.159.

38. Lahat N, Shapiro S, Karban A, Gerstein R, Kinarty A, Lerner A. Cytokine profile in coeliac disease. Scand J Immunol. 1999;49(4): 441–6. doi: 10.1046/j.1365-3083.1999.00523.x.

39. Nedwin GE, Naylor SL, Sakaguchi AY, Smith D, Jarrett-Nedwin J, Pennica D, Goeddel DV, Gray PW. Human lymphotoxin and tumor necrosis factor genes: structure, homology and chromosomal localization. Nucleic Acids Res. 1985;13(17): 6361–73. doi: 10.1093/nar/13.17.6361.

40. Suh JH, Gong EY, Hong CY, Park E, Ahn RS, Park KS, Lee K. Reduced testicular steroidogenesis in tumor necrosis factor-alpha knockout mice. J Steroid Biochem Mol Biol. 2008;112(1–3): 117–21. doi: 10.1016/j.jsbmb.2008.09.003.

41. Масленникова СО, Концевая ГВ, Золотых МА, Анисимова МВ, Феофанова НА, Мошкин МП, Недоспасов СА, Герлинская ЛА. Репродуктивные эффекты нокаута гена фактора некроза опухолей (TNF) у мышей. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2015;19(4): 404–9. doi: 10.18699/VJ15.052.

42. Eisermann J, Register KB, Strickler RC, Collins JL. The effect of tumor necrosis factor on human sperm motility in vitro. J Androl. 1989;10(4): 270–4. doi: 10.1002/j.1939-4640.1989.tb00100.x.

43. Koçak I, Yenisey C, Dündar M, Okyay P, Serter M. Relationship between seminal plasma interleukin-6 and tumor necrosis factor alpha levels with semen parameters in fertile and infertile men. Urol Res. 2002;30(4): 263–7. doi: 10.1007/s00240-002-0269-y.

44. Tronchon V, Vialard F, El Sirkasi M, Dechaud H, Rollet J, Albert M, Bailly M, Roy P, Mauduit C, Fenichel P, Selva J, Benahmed M. Tumor necrosis factor-alpha -308 polymorphism in infertile men with altered sperm production or motility. Hum Reprod. 2008;23(12): 2858–66. doi: 10.1093/humrep/den277.

45. Khademi Bami M, Dehghan Tezerjani M, Montazeri F, Ashrafzadeh Mehrjardi HR, Ghasemi-Esmailabad S, Sheikhha MH, Kalantar SM. Tumor Necrosis Factor Alpha -308 G/A Single Nucleotide Polymorphism and Risk of Sperm Abnormalities in Iranian Males. Int J Fertil Steril. 2017;11(2): 112–6. doi: 10.22074/ijfs.2017.4830.

46. Mauduit C, Besset V, Caussanel V, Benahmed M. Tumor necrosis factor alpha receptor p55 is under hormonal (follicle-stimulating hormone) control in testicular Sertoli cells. Biochem Biophys Res Commun. 1996;224(3): 631–7. doi: 10.1006/bbrc.1996.1077.

47. Liu RX, Wang Y, Wen LH. Relationship between cytokine gene polymorphisms and recurrent spontaneous abortion. Int J Clin Exp Med. 2015;8(6): 9786–92.

48. Lee BE, Jeon YJ, Shin JE, Kim JH, Choi DH, Jung YW, Shim SH, Lee WS, Kim NK. Tumor necrosis factor-α gene polymorphisms in Korean patients with recurrent spontaneous abortion. Reprod Sci. 2013;20(4): 408–13. doi: 10.1177/1933719112459237.

49. Li S, Wang L, Xing Z, Huang Y, Miao Z. Expression level of TNF-α in decidual tissue and peripheral blood of patients with recurrent spontaneous abortion. Cent Eur J Immunol. 2017;42(2): 156–60. doi: 10.5114/ceji.2017.69357.

50. Куртанов ХА, Данилова АЛ, Яковлева АЕ, Герасимова ВВ, Cаввина АД, Максимова НР. Молекулярно-генетическое исследование генов HLA II класса у больных целиакией в Якутии. Якутский медицинский журнал. 2015;(4): 5–7.

51. Penn DJ. The scent of genetic compatibility: sexual selection and the major histocompatibility complex. Ethology. 2002;108(1): 1–21. doi: 10.1046/j.1439-0310.2002.00768.x.

52. Wedekind C, Füri S. Body odour preferences in men and women: do they aim for specific MHC combinations or simply heterozygosity? Proc Biol Sci. 1997;264(1387): 1471–9. doi: 10.1098/rspb.1997.0204.

53. Болдырева МН, Барцева ОБ, Курило ЛФ, Ткаченко ЭР, Алексеев ЛП, Адамян ЛВ. Связь HLA-DRB1-генотипа с репродуктивными неудачами. Проблемы репродукции. 2010;(6): 59–63.

54. Carp HJ, Selmi C, Shoenfeld Y. The autoimmune bases of infertility and pregnancy loss. J Autoimmun. 2012;38(2–3):J266–74. doi: 10.1016/j.jaut.2011.11.016.


Дополнительные файлы

1. Table 1. The sequences of primers for genotyping of the gene polymorphisms IL10 (rs1800872), TNF (rs1800629), and CXCL10 (rs4386624)
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Посмотреть (78KB)    
Метаданные
2. Table 2. Frequencies of the alleles and genotypes IL10 (rs1800872), TNF (rs1800629), and CXCL10 (rs4386624) in the couples with reproductive dysfunction
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Посмотреть (75KB)    
Метаданные
3. Table 3. Frequencies of the alleles and genotypes IL10 (rs1800872), TNF (rs1800629), and CXCL10 (rs4386624) in women with reproductive dysfunction
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Посмотреть (77KB)    
Метаданные
4. Table 4. Frequencies of the alleles and genotypes IL10 (rs1800872), TNF (rs1800629), and CXCL10 (rs4386624) in men with reproduction disorders
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Посмотреть (74KB)    
Метаданные
5. Table 5. Prevalence of haplotypes HLA DQA1-DQB1 predisposing to celiac disease among the couples with reproduction disorders
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Посмотреть (37KB)    
Метаданные

Для цитирования:


Минайчева Л.И., Брагина Е.Ю., Жалсанова И.Ж., Чеснокова Н.А., Марусин А.В. Ассоциация генетических маркеров целиакии с репродуктивными нарушениями. Альманах клинической медицины. 2019;47(1):72-82. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2019-47-006

For citation:


Minaycheva L.I., Bragina E.Y., Zhalsanova I.Z., Chesnokova N.A., Marusin A.V. Association of celiac disease genetic markers with reproduction disorders. Almanac of Clinical Medicine. 2019;47(1):72-82. (In Russ.) https://doi.org/10.18786/2072-0505-2019-47-006

Просмотров: 131


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-0505 (Print)
ISSN 2587-9294 (Online)